Ni-NTA Agarose MagBeads(镍-NTA琼脂糖磁珠)是基于超顺磁性琼脂糖微球为载体,表面共价偶联NTA(次氮基三乙酸)螯合基团并负载镍离子的金属螯合亲和磁珠(IMAC)。本产品采用高纯度交联琼脂糖基质,搭配稳定的四齿螯合NTA结构,可特异性结合带有6×His、8×His标签的重组蛋 白。
产品兼容天然活性纯化(非变性)与变性纯化(含尿素/盐酸胍)两种实验体系,具备镍离子脱落率低、载量高、非特异性吸附低、磁分离速度快等优势,广泛适用于科研级重组蛋白快速纯化、高通量样本筛选、Pull-down互作实验等场景。
Ø 高结合载量:优化NTA螯合工艺,蛋白结合容量高,单次纯化可获得高产量目的蛋白
Ø 螯合稳定性强:四齿配位结构牢牢固定镍离子,耐受常规洗涤、低浓度还原剂,镍脱落极低,减少蛋白污染
Ø 双体系兼容:同时适配非变性温和条件与高浓度尿素/盐酸胍变性体系,适用范围广
Ø 极低非特异吸附:亲水性琼脂糖基质,有效减少杂蛋白非特异性结合,纯化产物纯度高
Ø 超顺磁特性:无剩磁、不团聚,磁响应速度快,30s内完成快速磁分离,操作便捷
Ø 可重复再生:支持多次脱镍、重镍活化再生,大幅降低实验成本
Ø 适配高通量:兼容离心管手动纯化、磁力板高通量筛选、自动化磁珠纯化设备
技术参数 | 指标标准 |
基质材质 | 4%交联高纯度琼脂糖 |
磁核材质 | 超顺磁性Fe₃O₄纳米颗粒 |
功能基团 | NTA(次氮基三乙酸),负载Ni²⁺ |
平均粒径 | 90μm |
蛋白结合载量 | ≥30 mg His标签蛋白/mL磁珠悬液 |
磁分离时间 | ≤30 s(0.5T磁力架) |
耐受pH范围 | 3.0–12.0 |
耐受变性剂 | 8M尿素、6M盐酸胍 |
耐受还原剂 | ≤5 mM DTT、β-巯基乙醇 |
储存体系 | 20%乙醇水溶液 |
保存条件 | 2–8℃避光保存,禁止冷冻 |
• 6×His/8×His标签重组蛋白纯化(原核、真核表达体系)
• 天然态活性蛋白纯化、变性态包涵体蛋白纯化
• 蛋白Pull-down实验、蛋白互作验证
• 高通量蛋白样本筛选与富集
• 酶蛋白、功能重组蛋白批量制备
通用缓冲液参考(可按需配制)
• 结合缓冲液:20 mM Tris、500 mM NaCl、10–20 mM 咪唑,pH 7.4–8.0
• 洗涤缓冲液:20 mM Tris、500 mM NaCl、40–60 mM 咪唑,pH 7.4–8.0
• 洗脱缓冲液:20 mM Tris、500 mM NaCl、250–500 mM 咪唑,pH 7.4–8.0
• 变性体系缓冲液:添加8M尿素或6M盐酸胍,适配对应结合、洗涤、洗脱配方
5.1 磁珠预处理
1、产品2–8℃取出,室温平衡10–15 min,充分颠倒混匀,使磁珠完全分散;
2、吸取所需体积磁珠悬液至离心管,置于磁力架静置30 s,完全吸附后彻底弃除上清;
3、加入等体积结合缓冲液轻柔重悬洗涤,磁力分离弃上清,重复洗涤2次,完成平衡。
5.2 样品结合
1、将预处理后的蛋白样品(裂解上清/变性溶解液)与平衡好的磁珠充分混合;
2、室温翻转孵育30–60 min(低丰度蛋白可4℃孵育1–2 h),保证充分结合;
3、磁力分离30 s,收集流出液,可用于检测结合效率。
5.3 杂蛋白洗涤
1、加入适量洗涤缓冲液轻柔吹打重悬磁珠,室温静置5 min;
2、磁力分离弃上清,重复洗涤3–5次,彻底去除非特异性结合杂蛋白;
3、最后一次洗涤尽量吸干残留上清,避免稀释洗脱液。
5.4 目的蛋白洗脱
1、加入适量洗脱缓冲液,轻柔重悬磁珠,室温孵育5–10 min;
2、磁力分离后小心收集上清,即为纯化His标签蛋白;
3、为提升回收率,可重复洗脱1次,合并两次洗脱液。
1、洗脱后的磁珠用超纯水洗涤2次,去除残留咪唑;
2、使用50 mM EDTA溶液孵育10 min,彻底脱除残留镍离子,洗涤干净;
3、0.1 M NiSO₄溶液重悬孵育20 min,重新螯合镍离子;
4、纯水洗涤多余镍离子,最后用20%乙醇重悬,2–8℃保存备用。
• 严禁冷冻磁珠,冷冻会破坏琼脂糖微球结构,导致磁珠失效、载量下降;
• 全程避免剧烈震荡、高强度吹打,防止磁珠破碎,增加非特异性吸附;
• 样本中避免高浓度EDTA、EGTA等螯合剂,会竞争脱去磁珠镍离子,降低结合效率;
• 还原剂浓度不可过高,高浓度DTT会导致镍离子脱落,建议控制在5 mM以内;
• 咪唑浓度需梯度优化,洗涤咪唑过低杂蛋白多,过高会造成目的蛋白提前洗脱;
• 本产品仅用于科研实验,禁止用于临床诊断、治疗及食品、药品生产领域。
• 储存条件:2–8℃避光密封保存,严禁冷冻、严禁室温长期放置;
• 未开封有效期:12个月;
• 开封后有效期:6个月(规范储存、无污染前提下);
• 再生磁珠:反复再生建议不超过5次,保证纯化性能稳定。
常见问题 | 原因分析 | 解决方案 |
蛋白结合率低 | 1.缓冲液含螯合剂;2.咪唑初始浓度过高;3.pH偏低;4.孵育时间不足 | 去除样本中EDTA;降低结合液咪唑;调节pH至7.5–8.0;延长孵育时间 |
洗脱产量低 | 洗脱咪唑浓度不足;洗脱时间过短;磁珠未充分重悬 | 提升洗脱咪唑浓度;延长孵育时间;洗脱时充分轻柔重悬磁珠 |
纯化蛋白纯度低 | 洗涤强度不足、咪唑浓度过低、杂蛋白吸附严重 | 提高洗涤咪唑浓度、增加洗涤次数;可添加少量Tween-20降低非特异吸附 |
镍离子脱落严重 | 高浓度还原剂、螯合剂污染、极端pH环境 | 严控缓冲液配方,避免高浓度DTT/EDTA,维持中性缓冲环境 |
公司名称:江苏千株松生物科技有限公司
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温馨提示:实验过程中遇到任何技术问题,可随时联系技术支持,我们将提供一对一实验方案优化与技术指导。


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