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耐碱蛋白A琼脂糖填料预装重力柱纯化手册

作者: 发布时间:2025-07-08 20:36:01点击:8

信息摘要:

 本手册提供使用耐碱琼脂糖填料重力预装柱(Gravity Pre-packed Column)从复杂样品(如细胞培养上清、腹水、血清)中纯化抗体(主要是IgG)的标准操作流程。该流程基于重力流原理,无需特殊设备。

目的: 本手册提供使用蛋白A琼脂糖填料重力预装柱(Gravity Pre-packed Column)从复杂样品(如细胞培养上清、腹水、血清)中纯化抗体(主要是IgG)的标准操作流程。该流程基于重力流原理,无需特殊设备。

一、所需材料与试剂

  1. 耐碱蛋白A琼脂糖重力预装柱: (常见规格:1mL,      5mL)

  2. 样品: 含有目标抗体的澄清溶液(需离心和0.45μm或0.22μm滤膜过滤)。

  3. 缓冲液 (所有缓冲液需用0.22μm或0.45μm滤膜过滤并脱气):

    • 平衡缓冲液 (Binding/Wash Buffer): 常用20-50       mM 磷酸钠或Tris-HCl, 100-150 mM NaCl, pH 7.0-8.0。(示例:20 mM 磷酸钠,       150 mM NaCl, pH 7.4)

    • 洗杂缓冲液 (Wash Buffer): 通常与平衡缓冲液相同。可增加严格性(如加入低浓度盐或去垢剂)。

    • 洗脱缓冲液 (Elution Buffer): 常用低pH缓冲液。

      • 酸性洗脱 (常用): 0.1        M 甘氨酸-HCl, pH 2.5-3.5 或 0.1 M 柠檬酸, pH 2.5-3.5。

      • 中性洗脱 (可选): 高浓度MgCl溶液。

    • 中和缓冲液: 1       M Tris-HCl, pH 8.0-9.0 (用于中和酸性洗脱液,防止抗体变性)。

    • 再生缓冲液 (Regeneration Buffer): 常用0.1-0.5       M NaOH。

    • 保存缓冲液 (Storage Buffer): 常用20%乙醇 (溶于纯水或平衡缓冲液),含0.05%叠氮化钠 (NaN, 剧毒,注意安全)       或其它抑菌剂。

  4. 收集管/瓶: 用于收集流穿液、洗杂液、洗脱液。

  5. 紫外分光光度计或蛋白检测试剂: 监测洗脱峰。

  6. pH计: 配制和验证缓冲液pH。

  7. 计时器、标记笔、冰盒、防护眼镜、手套等。

二、操作流程

重要提示:

  • 整个操作建议在冷室(4°C)或室温(15-25°C)进行,保持温度一致。

  • 操作中切勿让柱床干涸

  • 始终让缓冲液液面略高于柱床顶部,避免空气进入填料。

  • 依靠重力自然流下,不要加压。可通过调节柱出口阀门或夹子控制流速(推荐流速:0.5 - 2 mL/min)。

  • 柱体积 (CV)” 指预装柱中填料的体积(如1mL柱的1CV=1mL)。

1. 柱准备与平衡

1)将预装柱垂直固定在铁架台上。

2)打开柱顶盖和底端出口盖/塞子,让储存液流尽(收集废弃液)。

3)用至少5-10 CV 平衡缓冲液冲洗柱子。目的是置换储存液并使填料环境(pH, 离子强度)适合抗体结合。

4)让平衡缓冲液流尽,液面降至刚好接触柱床表面时关闭出口。

2. 样品上样 (Load)

1)将准备好的澄清样品轻轻加到柱床表面,避免扰动床面。

2)打开出口,让样品依靠重力缓慢流经柱床。目标抗体会结合到蛋白A填料上。

3)收集流穿液 (Flow-through)。可保留用于分析结合效率。

4)样品上样完成后,用少量(约0.5-1 CV)平衡缓冲液冲洗上样管/样品瓶内壁,并将冲洗液加入柱床顶部。

3. 洗杂 (Wash)

1)用大量洗杂缓冲液(至少10-15 CV)冲洗柱子。

2)目的:洗去未结合或弱结合的杂蛋白、核酸、色素等。

3)持续冲洗直至紫外吸收值(A280)降至稳定的基线水平(接近零)。

4)让洗杂液流尽,液面降至刚好接触柱床表面时关闭出口。

4. 洗脱 (Elution)

1)准备接收管:在收集管中加入适量中和缓冲液(如每1mL洗脱液预先加入100μL 1M Tris, pH 9.0),用于立即中和酸性洗脱液,保护抗体活性。

2)加入洗脱缓冲液(通常3-5 CV)。

3)打开出口,缓慢收集流出的洗脱液(目标抗体在此步被洗脱)。立即将收集的洗脱液与管中的中和缓冲液混合。

4)密切监测紫外吸收值(A280),收集出现明显蛋白峰的洗脱液(通常集中在1-2 CV内)。

5)洗脱完成后,让洗脱液流尽,液面降至刚好接触柱床表面时关闭出口。

5. 柱再生与平衡 (Regeneration & Re-equilibration)

1)用3-5 CV 再生缓冲液 (如0.1M NaOH)冲洗柱子。目的是去除强结合的杂质,彻底清洁填料。

2)保持NaOH在柱内接触5-15分钟。

3)用至少5-10 CV 纯水冲洗柱子,去除NaOH。

4)用至少5-10 CV 平衡缓冲液重新平衡柱子,使其恢复至结合状态,准备下次使用或保存。

6. 柱保存 (Storage)

1)用3-5 CV 保存缓冲液 (如含20%乙醇的平衡缓冲液或纯水) 冲洗柱子。

2)关闭柱顶端盖和底端出口盖/塞子。

3)在柱上明确标记保存液成分和日期。

4)4°C冷藏保存。

三、关键参数与优化建议

  • 样品预处理: 离心和过滤至关重要,防止堵塞柱子。样品pH和离子强度应接近平衡缓冲液。

  • 结合载量: 不同填料的动态结合载量(DBC)不同(通常10-50 mg IgG/mL填料)。避免过载。小规模预实验确定更佳上样量。

  • 流速: 重力流较慢,确保足够接触时间(0.5-2 mL/min)。过快会导致结合不完全。

  • 洗杂严格性: 如杂蛋白多,可在洗杂缓冲液中加入低浓度盐(如0.5M NaCl)或温和去垢剂(如0.1% Tween-20)。

  • 洗脱pH: 常用低pH洗脱。优化pH值(如2.5, 3.0, 3.5)以平衡洗脱效率和抗体稳定性。洗脱后立即中和

  • 洗脱峰监测: 强烈建议用紫外监测(A280)或在线检测,收集目标峰。

  • 再生强度: NaOH浓度和处理时间根据填料耐受性调整。强再生能延长柱寿命但可能影响填料稳定性。

四、注意事项

  1. 安全! 操作NaOH、酸性洗脱液、叠氮化钠时务必佩戴防护眼镜、手套,在通风橱内进行。妥善处理废液。

  2. 避免气泡: 所有缓冲液需脱气。操作中防止空气进入柱床。

  3. 避免干柱: 始终保证液面覆盖柱床。

  4. 切勿加压! 重力预装柱不能承受泵压。

  5. 样品清洁: 确保样品充分澄清,防止堵塞和污染填料。

  6. 缓冲液新鲜: 使用新鲜配制并正确过滤、脱气的缓冲液。

  7. 保存条件: 按建议在4°C保存于含抑菌剂的缓冲液中。长期不用需定期更换保存液。

  8. 柱子寿命: 遵循正确的再生和保存步骤,柱子通常可重复使用多次(10-50次或更多,取决于样品清洁度和操作)。

  9. 优化: 本手册为通用流程,针对特定抗体或样品,可能需要优化缓冲液pH、离子强度、洗杂和洗脱条件。

请根据您使用的具体蛋白A琼脂糖预装柱产品说明书进行调整和优化!

 


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