抗体纯化

rProtein A Agarose Beads 4FF(蛋白A填料凝胶介质,抗体纯化填料)

产品货号:QS01008

规格规格:5mL,10mL,50mL,100mL,500mL

储存条件:4-8°C

产品优势:特异性好,载量高

应用场景:抗体纯化,IP/Co-IP实验

产品手册:

一、  产品概述

rProtein A Agarose Beads 4FF(货号:QS01008)是一款高性能亲和层析介质,专为单克隆抗体、多克隆抗体及Fc-融合标签蛋白的分离与纯化设计,广泛应用于生物制药、分子生物学研究、临床检测等领域。本产品以高度交联的4%琼脂糖微球为基质,共价偶联重组Protein A配体,经优化工艺制备而成,兼具高结合载量、高特异性、高流速及良好的化学稳定性,可实现目的蛋白的一步高效纯化,大幅提升实验效率与产物纯度。

重组Protein A由大肠杆菌高效表达,去除了天然Protein A中与白蛋白及细胞表面结合的非必需结构域,仅保留五个高亲和力IgG结合区域(Ka=10⁸/M),能显著降低非特异性吸附,确保纯化产物的高纯度与高活性。基质采用高度交联技术,可耐受较高操作压力,适配重力柱、中压层析等多种操作模式,满足实验室小规模纯化与工业化中试、生产等不同场景需求。

二、  产品特性

        高结合载量:对人IgG的结合载量约30 mg/ml基质,能高效捕获样品中的目的蛋白,减少介质用量与实验成本。

        高特异性:重组Protein A仅特异性结合哺乳动物IgG的Fc片段,不结合人IgM、IgD、IgA及狗IgG,非特异性吸附极低,纯化产物纯度可达95%以上。

        优良的物理化学稳定性:基质高度交联,粒径均匀(45-165 μm),机械强度高,可耐受0.3 MPa(3 bar)操作压力,流速可达≤500 cm/h;在pH 3.0-10.0范围内稳定,可耐受常用缓冲液及变性剂(如6 M盐酸胍、8 M尿素),适配多种洗脱条件。

        操作便捷:可直接用于重力柱装填或适配各类层析系统,纯化流程简单快捷,整个操作周期约30分钟(取决于样品体积与粘稠度),且介质可重复使用,结合能力无明显损失。

        安全稳定:无动物源性成分,降低交叉污染风险;储存条件温和,2-8℃冷藏保存即可,无需冷冻,便于长期储存与使用。

三、  技术参数

参数名称

具体规格

产品名称

rProtein A Agarose Beads 4FF

基质

高度交联的4%琼脂糖微球

配体

大肠杆菌表达的重组Protein A(含5个IgG结合域)

粒径范围

45-165 μm

结合载量

约30 mg hIgG/ml 基质

操作压力

≤0.3 MPa(3 bar)

工作pH范围

3.0-10.0

化学稳定性

耐受所有常用缓冲液,6 M盐酸胍,8 M尿素,0.1 M氢氧化钠

推荐流速

重力流,100-300 cm/h;中压层析≤500   cm/h

储存缓冲液

含20%乙醇的1×PBS缓冲液(pH 7.4)

储存温度

2-8℃(严禁冷冻)

用途

哺乳动物IgG、Fc-融合蛋白的分离、纯化及免疫沉淀(IP)实验

四、  溶液配置

实验前需提前配置以下缓冲液,所有缓冲液均需用0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤,去除杂质与气泡,避免堵塞介质或影响纯化效果。

4.1 平衡液(Binding/Wash Buffer)

配方:0.02 M PB + 0.15 M NaCl,pH 7.0-7.4;或直接使用1×PBS缓冲液(pH 7.4)。

用途:平衡介质至与样品一致的缓冲体系,保护目的蛋白活性,同时去除介质表面的保护液。

4.2 洗脱液(Elution Buffer)

推荐配方(二选一):

        0.1 M 柠檬酸缓冲液,pH 3.0

        0.1 M 甘氨酸-HCl缓冲液,pH 3.0

用途:通过降低pH值,破坏Protein A与IgG Fc片段的结合,实现目的蛋白的洗脱。

4.3 中和液(Neutralizing Buffer)

配方:1.0 M Tris-HCl,pH 8.5-9.0。

用途:洗脱组分需立即用中和液调节至中性(pH 7.0-7.4),避免低pH环境破坏目的蛋白的生物活性,推荐用量为洗脱组分体积的1/10。

4.4 清洗液(Cleaning Buffer)

l  去沉淀/变性物质:6 M 盐酸胍溶液

l  去疏水性杂蛋白:70%乙醇或1% Triton X-100溶液

l  在位清洗:0.1 M 氢氧化钠溶液

五、  样品制备

1          样品缓冲液调整:确保样品所在缓冲液与平衡液一致,可通过透析、超滤或G25凝胶过滤进行缓冲液置换;若样品为血清、腹水或细胞培养液,可直接用平衡液稀释至合适浓度。

2          样品澄清处理:样品在上样前需进行离心(12000 rpm,4℃,10 min),去除沉淀;随后用滤膜过滤(粒径<45 μm用0.22 μm滤膜,45-165 μm用0.45 μm滤膜,>165 μm用0.8 μm滤膜),避免微小固体颗粒堵塞介质或影响结合效率。

3          样品浓度调节:若样品中抗体浓度过高(>2 mg/ml),可用平衡液稀释至1-2 mg/ml,避免浓度过高影响柱效与结合效果。

六、  纯化操作流程

本产品可适配重力柱法、孵育法及中压层析法,以下为最常用的重力柱法操作流程,操作过程中需避免引入气泡,所有溶液用量均按柱体积(CV)计算。

6.1 重力柱装填(若使用散装介质)

1          取合适规格的重力层析柱,装入下垫片,加入适量去离子水润洗柱管与垫片,关闭下出口。

2          将rProtein A Agarose Beads 4FF混悬液轻柔颠倒摇匀,用枪头吸取适量浆液加入柱管中(填料实际体积占悬液的1/2),打开下出口,流干保护液。

3          加入适量去离子水冲洗填料,待液体重力流干后,关闭下出口;装入润洗后的上垫片,确保垫片与填料之间无空隙且保持水平。

6.2 平衡

向装填好的重力柱中加入5个柱体积的平衡液,开启下出口,让平衡液自然流干,重复2-3次,直至柱床pH与电导率稳定(与平衡液一致),使介质处于与样品相同的缓冲体系。

6.3 上样

将预处理好的样品缓慢加入平衡后的柱中,控制流速,使样品保留时间至少2 min,确保目的蛋白与介质充分结合;可反复上样1-2次,提高结合效率,收集流出液(流穿液),用于SDS-PAGE检测结合情况。

6.4 洗杂

加入10-15个柱体积的平衡液(洗杂液),缓慢流干,去除介质表面非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液,可通过SDS-PAGE检测洗杂效果,直至洗脱峰基线平稳。

6.5 洗脱

加入5-10个柱体积的洗脱液,分段收集洗脱组分,每1个柱体积收集1管,分别检测(如紫外吸收法,OD280 nm);收集所有有吸收峰的组分,立即向每管洗脱液中加入1/10体积的中和液,轻柔混匀,调节pH至中性,防止目的蛋白变性。

6.6 介质再生与保存

1          再生:洗脱完成后,加入3个柱体积的平衡液冲洗介质,再加入5个柱体积的去离子水平衡,可重复使用(推荐使用次数不超过10次),若结合效率下降,需进行在位清洗。

2          保存:再生后的介质,加入5个柱体积的20%乙醇溶液,密封柱管,置于2-8℃冷藏保存;长期不使用时,需定期检查保护液,若出现浑浊、沉淀等污染迹象,需更换保护液或丢弃。

七、  在位清洗(CIP)

当介质出现流速变慢、结合载量下降或杂蛋白吸附增多时,需进行在位清洗,去除介质表面的沉淀、变性蛋白及疏水性杂质,恢复介质性能。

1          去除沉淀/变性物质:用2个柱体积的6 M盐酸胍溶液冲洗介质,停留5 min,然后立即用5个柱体积的平衡液(pH 7.4)冲洗,直至pH与电导率稳定。

2          去除疏水性杂蛋白:用3-4个柱体积的70%乙醇或2个柱体积的1% Triton X-100溶液冲洗,然后立即用5个柱体积的平衡液冲洗,直至基线平稳。

3          深度清洗:用0.1 M氢氧化钠溶液缓慢冲洗不少于5个柱体积,然后用去离子水冲洗至pH中性,再用平衡液平衡后,即可重新使用或保存。

八、  常见问题及解决方案

常见问题

可能原因

解决方案

流速变慢

1. 筛板堵塞;2. 介质被蛋白/杂质堵塞;3. 样品未过滤,含微小固体颗粒

1. 清洗或更换筛板;2. 按第7部分进行在位清洗;3. 样品重新离心、过滤后上样

洗脱组分中无目的蛋白

1. 上样量过载;2. 样品pH/缓冲液不合适,结合力弱;3. 洗脱条件不当;4. 抗体降解或沉淀

1. 减少上样量;2. 调整样品pH至7.0-7.4,用平衡液置换缓冲液;3. 降低洗脱液pH至2.5-3.0,增加洗脱体积;4. 优化样品保存条件,避免高温、过酸过碱

目的蛋白回收率低

1. 上样流速过快,结合不充分;2. 洗杂不彻底,杂蛋白竞争结合;3. 介质载量下降

1. 降低上样流速,延长保留时间;2. 增加洗杂体积,直至基线平稳;3. 对介质进行在位清洗,若无效则更换新介质

纯化产物纯度低

1. 样品未预处理,杂蛋白过多;2. 洗杂不彻底;3. 非特异性吸附增加;4. 柱床装填不均

1. 样品重新离心、过滤,必要时进行预处理;2. 增加洗杂体积和次数;3. 检查样品缓冲液,避免高浓度变性剂;4. 重新装填柱床

介质载量下降明显

1. 使用次数过多,配基脱落;2. 杂质长期积累,未及时清洗;3. 操作条件超出耐受范围

1. 更换新介质;2. 定期进行在位清洗;3. 严格遵循操作pH、压力及流速要求

九、  注意事项

1          本产品仅用于科研、工业生产,不用于临床诊断或治疗。

2          介质从2-8℃取出后,需在室温下恢复至室温,再轻柔摇匀,避免温度骤变产生气泡或破坏介质结构。

3          操作过程中,所有缓冲液和样品需避免引入气泡,气泡会影响介质与蛋白的结合,降低纯化效率。

4          洗脱液为低pH溶液,具有腐蚀性,操作时需佩戴手套、护目镜等防护用品,避免接触皮肤和黏膜。

5          介质不可冷冻,冷冻会导致琼脂糖基质破裂,丧失结合能力;储存过程中需密封,防止污染和保护液挥发。

6          配基对低pH敏感,洗脱后需尽快用中和液调节pH,且低pH洗脱时间不宜过长,以延长介质使用寿命。

7          不同种属、亚型的IgG与Protein A的结合能力存在差异,使用前可参考相关文献,优化实验条件。

8          实验结束后,所用器皿需用去离子水清洗干净,避免残留缓冲液或蛋白影响后续实验。

十、  订购信息及相关产品

产品名称

货号

用途

rProtein A Agarose Beads 4FF

QS01008

IgG、Fc-融合蛋白纯化

耐碱rProtein A Agarose Beads 4FF

QS01007

高碱环境下IgG纯化

rProtein G Agarose Beads 4FF

QS01009

不同亚型IgG纯化

平衡液/洗脱液套装

定制

配套纯化使用,无需自行配置

十一、   售后服务

若您在产品使用过程中遇到任何问题,或对产品有疑问、需求,可通过以下方式联系我们,我们将在24小时内给予专业回复与技术支持。

咨询电话:17302508337(微信同号)

免责声明:本产品手册提供的操作方法为标准流程,实际实验中可根据样品特性和实验需求进行优化;因操作不当、样品质量等非产品本身问题导致的实验失败,本公司不承担相关责任。


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