1 产品概述
本系列预装柱采用Heparin Agarose Beads 6FF 亲和层析介质预先装填而成,专为肝素依赖性生物分子的快速纯化设计,广泛应用于抗凝血酶 III、凝血因子、DNA 结合蛋白、脂蛋白、核酸作用酶及类固醇受体的分离纯化。
产品核心优势
即开即用:工厂标准化装填,柱床均匀致密,批次间一致性优异,无需用户自行装柱,大幅节省实验时间
多规格覆盖:提供 1ml、5ml、20ml 三种标准规格,适配实验室小规模筛选、中试放大及小规模生产需求
高机械强度:采用 6% 高刚性交联琼脂糖基质,可耐受高流速操作,缩短纯化周期
高结合载量:配体密度 > 4mg/mL 介质,保证目的蛋白的高回收率
化学稳定性好:pH 稳定范围 4-12,兼容多种常用清洗和再生试剂
2 核心技术参数
2.1 通用性能参数
参数项 | 技术指标 |
基质 | 6% 高刚性交联琼脂糖 |
粒径范围 | 45-165μm |
配体 | 肝素钠 |
配体密度 | >4mg/mL 介质 |
更大操作压力 | ≤0.3MPa |
pH 稳定范围(工作 / 清洗) | 4-12 |
贮存溶液 | 20%(v/v)乙醇水溶液 |
推荐贮存温度 | 4-8℃ |
推荐使用温度 | 4-25℃ |
建议重复使用次数 | ≤10 次(视样品复杂度而定) |
2.2 规格参数对比
规格 | 柱内径 | 柱床高度 | 更大流速 | 推荐流速 | 更大上样量 |
1mL | 7mm | 26mm | 4mL/min | 1-2mL/min | ≤10mg |
5mL | 10mm | 64mm | 10mL/min | 3-5mL/min | ≤50mg |
20mL | 16mm | 100mm | 25mL/min | 8-15mL/min | ≤200mg |
注:更大上样量基于抗凝血酶 III 测定,实际载量因目的蛋白性质、样品纯度及操作条件而异。
3 溶液配制
所有缓冲液配制完成后,必须经 0.45μm 滤膜过滤并脱气后方可使用,避免杂质堵塞筛板或气泡进入柱体影响分离效果。
结合 / 洗杂缓冲液:50mM Tris-HCl,10mM 柠檬酸钠,pH 7.4
洗脱缓冲液:50mM Tris-HCl,10mM 柠檬酸钠,1M NaCl,pH 7.4
再生缓冲液:0.1M NaOH 溶液、6M 盐酸胍溶液、8M 尿素溶液、70% 乙醇溶液
保存液:20%(v/v)乙醇水溶液
4 样品制备
样品预处理是保证纯化效果和延长柱体使用寿命的关键步骤:
澄清过滤:所有样品上样前必须经 0.22μm 或 0.45μm 滤膜过滤;若样品浑浊,先于 4℃、12000rpm 离心 10 分钟,取上清液过滤。
缓冲体系匹配:确保样品 pH 值为 7.0-7.6,离子强度与结合缓冲液一致。
血清、腹水、细胞培养液等可直接用结合缓冲液稀释;
高盐或 pH 偏离较大的样品,需用结合缓冲液透析过夜(透析液体积为样品的 100 倍)或通过脱盐柱置换缓冲液。
上样量控制:根据柱体规格和目的蛋白含量调整上样体积,避免过载导致纯度下降。
5 纯化操作流程
5.1 使用前准备
将预装柱从 4℃冰箱取出,室温平衡 15-30 分钟,避免柱内产生冷凝气泡。
检查柱体外观,确认无漏液、柱床无干裂、无气泡及分层现象。
拧下柱体上下端的保护帽,保留保护帽以备后续保存使用。
将柱体连接至中压色谱系统,注意流向(柱体箭头方向为流动相方向,严禁反向高压冲洗)。
5.2 标准纯化步骤
步骤 | 操作说明 | 1ml | 5ml | 20ml |
1. 平衡 | 用结合缓冲液冲洗柱体,至紫外吸收值和电导率基线平稳 | 5mL | 25mL | 100mL |
2. 上样 | 将预处理后的样品以推荐工作流速上样,收集流出液 | - | - | - |
3. 洗杂 | 用洗杂缓冲液冲洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,至紫外吸收值回到基线 | 10-15mL | 50-75mL | 200-300mL |
4. 洗脱 | 用洗脱缓冲液进行一步或线性梯度洗脱,收集洗脱峰组分 | 5-10mL | 25-50mL | 100-200mL |
5. 柱后平衡 | 用结合缓冲液冲洗柱体,为下一次使用做准备 | 3mL | 15mL | 60mL |
6. 保存 | 用 20% 乙醇水溶液冲洗柱体,拧紧上下保护帽 | 5mL | 25mL | 100mL |
重要提示:洗脱过程中可根据目的蛋白性质调整 NaCl 浓度梯度,以获得更高的分离度;若无需立即重复使用,完成柱后保存步骤后置于 4℃冰箱储存。
5.3 纯化效果检测(SDS-PAGE)
取原始样品、流出液、洗杂液和洗脱液组分,进行 SDS-PAGE 电泳分析,判定目的蛋白的纯度和回收率。
关键注意事项:若样品中含有盐酸胍,会中和 SDS 电荷导致电泳沉淀。此类样品需先透析处理:用 PBS 作为透析液,透析 2 次,每次 1 小时,透析液体积为样品的 100 倍。
6 柱体清洗与再生
随着使用次数增加,非特异性结合的蛋白和聚集物会导致柱压升高、结合载量下降,此时需进行清洗再生。根据污染类型选择对应方法:
6.1 常规再生(每次使用后推荐)
用 3 倍柱体积的 0.1M NaOH 溶液冲洗柱体,接触时间不超过 15 分钟,立即用 5 倍柱体积的 PBS(pH 7.4)冲洗至中性,再用结合缓冲液平衡。
6.2 深度再生(污染较严重时)
去除沉淀 / 变性蛋白:用 2 倍柱体积的 6M 盐酸胍或 8M 尿素溶液冲洗,立即用 5 倍柱体积的 PBS 冲洗至中性。
去除疏水性杂质:用 3 倍柱体积的 70% 乙醇溶液冲洗,立即用 5 倍柱体积的 PBS 冲洗至无残留。
再生限制:严禁使用 1% Triton X-100 等表面活性剂清洗预装柱,以免导致柱床塌陷;再生总次数不超过 10 次,超过后柱效会显著下降。
7 注意事项与常见问题
7.1 通用注意事项
储存要求:严禁冷冻或高温保存,否则会破坏琼脂糖基质结构;长期不用时,需将柱体充满 20% 乙醇水溶液,拧紧保护帽,置于 4℃密封保存。
操作限制:严禁超过更大操作压力和流速;严禁反向高压冲洗柱体;严禁拆开柱体取出填料。
避免干柱:使用过程中切勿让柱床干涸,否则会导致柱床开裂、柱效不可逆下降。
试剂兼容性:避免使用强氧化剂、高浓度有机溶剂(如丙酮、乙腈)处理柱体,以免导致配体脱落。
7.2 常见问题及处理
问题现象 | 可能原因 | 处理方法 |
柱压过高 | 1. 样品未过滤,颗粒杂质堵塞筛板 2. 上样量过大,蛋白聚集 3. 杂质积累未及时再生 | 1. 所有样品必须经 0.22μm 滤膜过滤 2. 降低上样量 3. 按深度再生方法清洗柱体 |
目的蛋白回收率低 | 1. 上样流速过快,结合不充分 2. 洗杂不彻底,杂蛋白竞争结合 3. 洗脱条件过强 | 1. 降低上样流速至推荐范围下限 2. 增加洗杂缓冲液体积 3. 降低洗脱液 NaCl 浓度或采用梯度洗脱 |
洗脱峰拖尾 / 分叉 | 1. 柱床出现气泡或分层 2. 样品过载 3. 柱体使用次数过多,柱效下降 | 1. 用结合缓冲液低速冲洗排除气泡 2. 减少上样量 3. 更换新的预装柱 |
柱体漏液 | 1. 接头未拧紧 2. 柱体两端密封垫老化 | 1. 拧紧色谱系统接头 2. 更换密封垫或新柱体 |
8 订购信息
本系列预装柱产品
产品名称 | 规格 | 产品货号 |
Heparin Agarose Beads 6FF 中压层析预装柱 | 1ml | QS01040B-1ml |
Heparin Agarose Beads 6FF 中压层析预装柱 | 5ml | QS01040B-5ml |
Heparin Agarose Beads 6FF 中压层析预装柱 | 20ml | QS01040B-20ml |
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